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Bowtie 2を使って素早くホスト由来のリードを除く

2021 4/16 タイトル変更、文章修正, 画像差し替え


2022/09/07 追記


Bowtie 2の--un-concオプションを使うと、リファレンスに適切にマッピングされなかったペアエンドリード(discordant read pairs)を別出力できる。このオプションを利用することで、ホストゲノムのリードを素早く除外できる。


discordant read pairの詳細




#conda (bioconda link)
mamba install -c bioconda bowtie2 -y

#docker (dockerhub link)
docker pull biocontainers/bowtie2


$ bowtie2

No index, query, or output file specified!

Bowtie 2 version 2.4.2 by Ben Langmead (,


  bowtie2 [options]* -x <bt2-idx> {-1 <m1> -2 <m2> | -U <r> | --interleaved <i> | -b <bam>} [-S <sam>]


  <bt2-idx>  Index filename prefix (minus trailing .X.bt2).

             NOTE: Bowtie 1 and Bowtie 2 indexes are not compatible.

  <m1>       Files with #1 mates, paired with files in <m2>.

             Could be gzip'ed (extension: .gz) or bzip2'ed (extension: .bz2).

  <m2>       Files with #2 mates, paired with files in <m1>.

             Could be gzip'ed (extension: .gz) or bzip2'ed (extension: .bz2).

  <r>        Files with unpaired reads.

             Could be gzip'ed (extension: .gz) or bzip2'ed (extension: .bz2).

  <i>        Files with interleaved paired-end FASTQ/FASTA reads

             Could be gzip'ed (extension: .gz) or bzip2'ed (extension: .bz2).

  <bam>      Files are unaligned BAM sorted by read name.

  <sam>      File for SAM output (default: stdout)


  <m1>, <m2>, <r> can be comma-separated lists (no whitespace) and can be

  specified many times.  E.g. '-U file1.fq,file2.fq -U file3.fq'.


Options (defaults in parentheses):



  -q                 query input files are FASTQ .fq/.fastq (default)

  --tab5             query input files are TAB5 .tab5

  --tab6             query input files are TAB6 .tab6

  --qseq             query input files are in Illumina's qseq format

  -f                 query input files are (multi-)FASTA .fa/.mfa

  -r                 query input files are raw one-sequence-per-line

  -F k:<int>,i:<int> query input files are continuous FASTA where reads

                     are substrings (k-mers) extracted from a FASTA file <s>

                     and aligned at offsets 1, 1+i, 1+2i ... end of reference

  -c                 <m1>, <m2>, <r> are sequences themselves, not files

  -s/--skip <int>    skip the first <int> reads/pairs in the input (none)

  -u/--upto <int>    stop after first <int> reads/pairs (no limit)

  -5/--trim5 <int>   trim <int> bases from 5'/left end of reads (0)

  -3/--trim3 <int>   trim <int> bases from 3'/right end of reads (0)

  --trim-to [3:|5:]<int> trim reads exceeding <int> bases from either 3' or 5' end

                     If the read end is not specified then it defaults to 3 (0)

  --phred33          qualities are Phred+33 (default)

  --phred64          qualities are Phred+64

  --int-quals        qualities encoded as space-delimited integers


 Presets:                 Same as:

  For --end-to-end:

   --very-fast            -D 5 -R 1 -N 0 -L 22 -i S,0,2.50

   --fast                 -D 10 -R 2 -N 0 -L 22 -i S,0,2.50

   --sensitive            -D 15 -R 2 -N 0 -L 22 -i S,1,1.15 (default)

   --very-sensitive       -D 20 -R 3 -N 0 -L 20 -i S,1,0.50


  For --local:

   --very-fast-local      -D 5 -R 1 -N 0 -L 25 -i S,1,2.00

   --fast-local           -D 10 -R 2 -N 0 -L 22 -i S,1,1.75

   --sensitive-local      -D 15 -R 2 -N 0 -L 20 -i S,1,0.75 (default)

   --very-sensitive-local -D 20 -R 3 -N 0 -L 20 -i S,1,0.50



  -N <int>           max # mismatches in seed alignment; can be 0 or 1 (0)

  -L <int>           length of seed substrings; must be >3, <32 (22)

  -i <func>          interval between seed substrings w/r/t read len (S,1,1.15)

  --n-ceil <func>    func for max # non-A/C/G/Ts permitted in aln (L,0,0.15)

  --dpad <int>       include <int> extra ref chars on sides of DP table (15)

  --gbar <int>       disallow gaps within <int> nucs of read extremes (4)

  --ignore-quals     treat all quality values as 30 on Phred scale (off)

  --nofw             do not align forward (original) version of read (off)

  --norc             do not align reverse-complement version of read (off)

  --no-1mm-upfront   do not allow 1 mismatch alignments before attempting to

                     scan for the optimal seeded alignments

  --end-to-end       entire read must align; no clipping (on)


  --local            local alignment; ends might be soft clipped (off)



  --ma <int>         match bonus (0 for --end-to-end, 2 for --local) 

  --mp <int>         max penalty for mismatch; lower qual = lower penalty (6)

  --np <int>         penalty for non-A/C/G/Ts in read/ref (1)

  --rdg <int>,<int>  read gap open, extend penalties (5,3)

  --rfg <int>,<int>  reference gap open, extend penalties (5,3)

  --score-min <func> min acceptable alignment score w/r/t read length

                     (G,20,8 for local, L,-0.6,-0.6 for end-to-end)



  (default)          look for multiple alignments, report best, with MAPQ


  -k <int>           report up to <int> alns per read; MAPQ not meaningful


  -a/--all           report all alignments; very slow, MAPQ not meaningful



  -D <int>           give up extending after <int> failed extends in a row (15)

  -R <int>           for reads w/ repetitive seeds, try <int> sets of seeds (2)



  -I/--minins <int>  minimum fragment length (0)

  -X/--maxins <int>  maximum fragment length (500)

  --fr/--rf/--ff     -1, -2 mates align fw/rev, rev/fw, fw/fw (--fr)

  --no-mixed         suppress unpaired alignments for paired reads

  --no-discordant    suppress discordant alignments for paired reads

  --dovetail         concordant when mates extend past each other

  --no-contain       not concordant when one mate alignment contains other

  --no-overlap       not concordant when mates overlap at all




                     Bowtie2 will, by default, attempt to align unpaired BAM reads.

                     Use this option to align paired-end reads instead.

  --preserve-tags    Preserve tags from the original BAM record by

                     appending them to the end of the corresponding SAM output.



  -t/--time          print wall-clock time taken by search phases

  --un <path>        write unpaired reads that didn't align to <path>

  --al <path>        write unpaired reads that aligned at least once to <path>

  --un-conc <path>   write pairs that didn't align concordantly to <path>

  --al-conc <path>   write pairs that aligned concordantly at least once to <path>

    (Note: for --un, --al, --un-conc, or --al-conc, add '-gz' to the option name, e.g.

    --un-gz <path>, to gzip compress output, or add '-bz2' to bzip2 compress output.)

  --quiet            print nothing to stderr except serious errors

  --met-file <path>  send metrics to file at <path> (off)

  --met-stderr       send metrics to stderr (off)

  --met <int>        report internal counters & metrics every <int> secs (1)

  --no-unal          suppress SAM records for unaligned reads

  --no-head          suppress header lines, i.e. lines starting with @

  --no-sq            suppress @SQ header lines

  --rg-id <text>     set read group id, reflected in @RG line and RG:Z: opt field

  --rg <text>        add <text> ("lab:value") to @RG line of SAM header.

                     Note: @RG line only printed when --rg-id is set.

  --omit-sec-seq     put '*' in SEQ and QUAL fields for secondary alignments.


                     Suppress standard behavior of truncating readname at first whitespace 

                     at the expense of generating non-standard SAM.

  --xeq              Use '='/'X', instead of 'M,' to specify matches/mismatches in SAM record.


                     Exclude soft-clipped bases when reporting TLEN


                     Append FASTA/FASTQ comment to SAM record



  -p/--threads <int> number of alignment threads to launch (1)

  --reorder          force SAM output order to match order of input reads

  --mm               use memory-mapped I/O for index; many 'bowtie's can share



  --qc-filter        filter out reads that are bad according to QSEQ filter

  --seed <int>       seed for random number generator (0)


                     seed rand. gen. arbitrarily instead of using read attributes

  --version          print version information and quit

  -h/--help          print this usage message

(ERR): bowtie2-align exited with value 1






1、マッピング前にhg38 のbowtie2 index(FM Index)を作成する必要がある。ここではrefgenieを使って作成済みのindexをダウンロードする。

refgenie pull -g hg38 -a bowtie2_index


2、"--un-conc"をつけて、ペアエンドのfastqをhg38 に対してグローバルアラインメントモードの--sensitive設定(デフォルト)でマッピングする。ペアエンドの向きはデフォルトのFR、インサートサイズの正常値は0-500とした。スレッドは32指定した。

bowtie2 -x <path>/<to>/bowtie2_index -p 32 -1 pair_R1.fq.gz -2 pair_R2.fq.gz --un-conc-gz unmap_R%.fq.gz --fr -I 0 -X 500 -S mapped.sam

bowtie2 -x bowtie2_index -p 32 -1 pair_R1.fq.gz -2 pair_R2.fq.gz --un-conc-gz unmap_R%.fq.gz --fr -I 0 -X 500 -S /dev/null
  • --un-conc <path> write pairs that didn't align concordantly to <path>
  • --fr/--rf/--ff -1, -2 mates align fw/rev, rev/fw, fw/fw (--fr)
  • -I/--minins <int> minimum fragment length (0)
  • -X/--maxins <int> maximum fragment length (500)

"--un-conc <prefix>"フラグを立てることで、samファイルに加えてunmap_R1.fq.gzとunmap_R2.fq.gzが書き出される(bzip2出力なら"--un-conc-bz2"、rawなら"--un-conc")。unmap_R1.fq.gzとunmap_R2.fq.gzを使って再びhg38にマッピングして視覚化した(下の写真)。写真は上が処理前、下が処理後だが、マッピングされるリードは処理後も一定数見られた。





bowtie2 -x bowtie2_index -p 32 -1 pair_R1.fq.gz -2 pair_R2.fq.gz --al-conc map_R%.fq.gz --fr -I 0 -X 500 -S /dev/null
  • --al-conc   write pairs that aligned concordantly at least once to <path>


  • "--un-conc"で書き出されるのは不適切なペアエンドリードなので、インサートサイズがおかしいリードペア、片方または両方がマッピングされないリードペア、向きが適切ではないリードペア(上ではFR以外)、はfastqに書き出される。マイクロバイオーム由来のリードも稀にヒトゲノムにマッピングされる事はあるだろうが、ペアエンドのリードが両方適切にヒトゲノムにマッピングされる可能性は低いため、proper read pairsとdiscordant read pairsを分けるこの方法は有効に働く。
  • ペアエンドは同期が維持されている。このまま下流解析に進めることができる
  • この方法では、ヒトの多型部位などリードが適切にマッピングされない部位のリードペアも出力される。ホストゲノムのリードはかなり除外されるが、このようなリードは除去されずに残ることは知っておく(=保守的な方法)。
  • ライブラリ調整法によっては、インサートサイズ分布はかなりロングテールになることがあり、このようなデータでは、インサートサイズが長いホストゲノムのリードペアも全て異常なリードとして書き出される。回避するには、インサートサイズの正常値maxを増やす(データを見て検討する)。
  • この方法は構造変異(SV)関連リードを濃縮することにも利用されている。ただし、シグナル/バックグラウンド比が変わるため、SVの方法論によってはおかしくなる点に注意が必要。異常なリードが濃縮されるということは、例えば、スモールゲノムのトランスポゾン導入シークエンシングリードを分析する時、この方法でターゲットゲノムのリードを除き、外来のトランスポゾン関連リードを簡単にエンリッチできるということを意味する(エンリッチ後、最低カバレッジ閾値を少しだけ大きめに指定してde novoアセンブルし、bandage上でトランスポゾン配列をblast検索する)。
  • "--un-conc"オプションはhisat2にも存在する。
  • この方法以外にも、sam/bamのFLAG(解説ページ)を使ってdiscordant read pairsを分離することもできる。



Fast gapped-read alignment with Bowtie 2

Ben Langmead & Steven L Salzberg

Nat Methods. 2012 Mar 4;9(4):357-9